Adeno/Rotavirüs

Tek Aşamalı Rotavirus ve Adenovirus Birlikte Kaset Test (Gaita)
Kullanma Kılavuzu
Hızlı,tek aşamalı rotavirus ve adenovirus testi insan gaitasında bu virüslerin varlığını tespit eder.
Sadece profesyonel kullanım içindir.
Kullanım Amacı
Tek Aşamalı Rotavirus ve Adenovirus Birlikte Kaset Test (Gaita), insan gaita numunesinde söz konusu
virüslerin varlığını tespit eden hızlı kromatografik immun ölçüm yöntemidir.
Özet
Akut ishal, başta gelişmiş ülkeler olmak üzere tüm dünya ülkelerinde bebek ölümlerinin en büyük
nedenidir(1). Rotavirüs bebeklerde akut gastroentritin en büyük nedeni olarak tanımlanmaktadır(2). 1973
yıllında bakteriyal olmayan gastroentritle ilişkin Rotavirüs varlığı keşf edildi ve birçok araştırmaya konu
oldu. Rotavirüs gaita-ağız yolu ile bulaşır ve kuluçka dönemi 1-3 gündür. Antijen tespiti için en uygun zaman
bulaşmadan 2-5 gün sonradır. Bazen virüs varlığı ishal döneminde de görünür. Yenidoğanlar ve immun
yetersizliği olan vakalarda Rotavirüs enfeksiyonunda yüksek ölüm riski söz konusudur(3). Rotavirüs
enfeksiyonları çoğunlukla yaz aylarında görünür. Her yıl binlerce Rotavirüs enfeksiyonu rapor edilmektedir
(4). Hastanelere akut ishal şikayeti ile başvuran çocukların %50’sinde rotavirüs enfeksiyonu tespit
edilmektedir (5). Hücre çekirdeğinde çoğlan virüs karakteristik sitopatik etki oluşturan maddelerin
sentezlenmesine neden olur. Rotavirüsün kültür ortamında üretimi çok zor olduğundan bu yöntem tanı
amaçlı kullanılmaz. Bunun yerinde gaitada Rotavirüs tanısı için birçok alternatif yöntem geliştirilmiştir.
Araştırmalar rotavirüsten sonra başta Ad40 ve Ad41 olmak üzere enterik adenovirüslerin çocuklarda ishal
nedeni olduğunu ortaya koymuştur(6,7,8,9). Bu virüs yaygın olarak bir yaşında çocuklarda ishal endeni
olarak tespit edilmiştir. Ancak enfeksiyon sıklığı ilk 2 yılda oldukça sık olmakla beraber her yaşta görünebilir.
İleri araştırmalar viral gastroentrit vakalarının %4-15’nin adenovirüs kaynaklı olduğunu ortaya koymaktadır
(5,6,7,8,9) Gastroentrit vakalarında adenovirüsün hızlı ve doğru teşhisi etiyolojik ve hızlı tedavi için büyük
önem ar zetmektedir. Elektron mikroskopisi ve nukleik asit hibridizasyon yönetmleri pahalı ve ileri
laboratuar olanklarına gereksinim duymaktadır.
Tek Aşamalı Rotavirus ve Adenovirus Birlikte Kaset Test (Gaita), 10 dakika gibi kısa sürede insan gaita
numunesinde söz konusu virüslerin hassas antikor tespit eden hızlı kromatografik immun ölçüm
yöntemidir.
PRENSİP
Tek Aşamalı Rotavirus ve Adenovirus Birlikte Kaset Test (Gaita), insan gaita numunesinde söz konusu
virüslerin varlığını tespit eden hızlı lateral akış kromatografik immun ölçüm yöntemidir. Test kasetlerinde
“R” bölgesinde anti-rotavirüs, “A” bölgesinde ise anit-adenovirüs antikorları ile kaplanmıştır. Test sırasında
numune bu bölgedeki antikorlarla reaksiyona girer. Bu kompleks bölgede mavi veya kırmızı çizgi oluşmuna
neden olur. Renkli çizginin oluşumu pozitif sonucu, renkli çizgi oluşmaması ise negatif sonucu gösterir.
Kasetlerde internal “C” çizgisi testin verimli çalışması ve yeterli numune verilip verilmediğini gösterir.
REAKTİFLER
Anti-rotavirüs ve anti-adenovirüs antikorları önceden membrana kaplanmıştır.
ÖNLEMLER
-Sadece profesiyonel vucüt dışı tanı amaçlı kullanılır. Son kullanım tarihinden sonra kullanmayın.
-Kullanım anına kadar strip veya kasetler folyo ambalajında saklanmalıdır.
-Kit ve numunelerin bulunduğu ortamda yemeyin, içmeyin ve sigara kullanmayın.
-Ambalaji bozulmuş testleri kullanmayın.
-Tüm kit içeriğinin enfeksiyon riski taşıyabileceğini göz önünde bulundurarak kullanılmalıdır. Test hazırlık,
uygulama ve atıklar konusunda mikrobiyolojik güvenlik tedbirlerine uyulmalıdır.
- Test hazırlık, uygulama aşamasında önlük, eldiven ve gözlük kullanılmalıdır.
-Test tamamlandıktan sonra biyolojik atık kurallaına uygun imha edilmelidir.
-Sıcaklık ve nem test sonucunu etkileyebilir.
SAKLAMA VE STABİLİTE
Kitler ambalajında oda sıcaklığı veya buzdolabında saklanabilir (2-30°C). Testler folyo üzerinde yazılı tarihe
kadar stabildir. Test uygulanacağı ana kadar folyodan çıkartılmamalıdır. Dondurmayın. Son kullanım tarihi
geçmiş kitleri kullanmayın.
NUMUNE TOPLAMA VE HAZIRLAMA
-Numunenin enfeksiyon belirtilerinin bulunduğu dönemde alınması çok önemlidir. Bunun için gastroentrit
şikayetlerinin başlamasından itibaren 3-5 gün içinde alınması uygundur. Numune geç alınırsa antijen
miktarında azalma veya diarrheic episodlara bağlanarak tespiti zorlaşabilir.
-Gaita numuneleri, deterjan, koruyucu ve transport besiyeri içermeyen, temiz, kuru ve su geçirmez kaplara
alınmalıdır.
-Reaktifleri kullanım öncesi oda sıcaklığına getirin.
MATERYALLER
TEMİN EDİLEN MATERYALLER
-Strip veya kaset test, -Damlalık, -Tampon içeren numune toplama tüpü, -Kullanım kılavuzu.
TEMİN EDİLMESİ GEREKEN MATERYALLER
-Numune taşıma sepeti, -Lab. saati, -Gerektiğinde kullanılmak üzere santrifüj ve 80ul mikropipet.
KULLANIM TARİFİ
Kullanım öncesi tüm test kasetleri, numune ve tamponun oda sıcaklığına (15-30°C) gelmesini sağlayın.
1-Gaita numunesi almak için;
Yeterli miktarda virüs almak için yeterli miktarda gaita (1-2 ml veya 1-2g) gaita temiz ve kuru bir kaba alın.
Sağlıklı sonuç almak için numune alındıktan sonra en fazla 6 saat içinde test uygulanması tavsiye edilir.
Toplanan numune 2-8°C arasında 3 gün saklanabilir. Dha uzun süre numuen saklanması için -20°C
uygundur.
2-Gaita numune uygulamasında
-Katı numuneler için:
Numune toplama tüpünü kıvırarak açın, aplikatörü en az gaitanın rasgele 3 farklı bölgesine daldırarak
yaklaşık 50 mg (1/4 bezelye büyüklüğünde) gaitaya bulaştırın. Kepçe gibi gaita numunesi alımayın.
-Sıvı numuneler için;
Damlalığa dikey durumda, giata alın, tüpe 2 damla (yaklaşık 50ul) gaita damlatın. Aplikatör kıvırarak
kapatın, iyice karıştırın.
3-Folyoyu açmadan önce oda sıcaklığına getirin, Kaseti floyudan çıkartın ve en kısa sürede kullanın. En iyi
sonuç için floyodan çıkarılan testi hemen kullanın.
4-Numune toplama tüpünü dik tutun, kapağın üzerinde tepe noktasını basarak kırın. Tüpü ağızı aşağıda
olacak şekilde tutup kasetin numune uygulama bölgesine “S” 2 tam damla damlatın. Hava kabacığı
olmamasına özen gösterin. Aşağıdaki şekile bakın.
5-Sonucu 10 dakika içinde değerlendirin. Sonuç 20 dakikadan sonra değerlendirilmemelidir.
Not: Numune katılaşmışsa (partikül varsa), numune tüpünü santifüj edin. Üstteki sıvıdan 80ul alıp, kasetin
numune uygulama “S” alanına pipetleyin. Saati kurun ve 5. Aşamyı takip edin.
ELDE EDİLEN DEĞERLER
Tek Aşamalı Rotavirus ve Adenovirus Birlikte Kaset Test (Gaita), lateks aglutinasyon yöntemi ile
karşılaştırılmış ve %99’un üzerinde uyumlu olduğu tespit edilmiştir.
PERFORMANS ÖZELLİKLERİ
Klinik hassasiyet, özgünlük ve doğruluk
Tek Aşamalı Rotavirus ve Adenovirus Birlikte Kaset Test (Gaita) performansı çocuklardan alınan 545 gaita
numunesinde lateks aglutinasyon testi ile karşılaştırmalı olarak yapıldı. Buna göre tTek Aşamalı Rotavirus ve
Adenovirus Birlikte Kaset Test (Gaita) test sonuçlarının;
Metod
Lateks Aglutinasyon
Toplam Sonuç
Tek Aşamalı Rota
Sonuç
Poziitif
Negatif
virüs Testi
Pozitif
178
3
181
Negatif
0
131
131
Toplam Sonuç
178
134
312
Bağıl hassasiyeti : %99.9 üzerinde (%97.9-%100)
Bağıl özgünlüğü : %97.8 üzerinde (%93.6-%99.5)
Bağıl doğruluğu : %99.0 üzerinde (%97.2-%99.8)
Güvenlik aralığı: %95 olarak tespit edilmiştir.
Metod
Tek Aşamalı
Adeno virüs Testi
SONUÇLARIN DEĞERLENDİRİLME
POZİTİF:
Rotavirüs Pozitif: “C” ve “R” bölgelerinde renkli çizgi oluşursa.
Adenovirüs Pozitif: “C” ve “A” bölgelerinde renkli çizgi oluşursa.
Rota ve Adenovirüs Pozitif: “C” ,”R” ve “A” bölgelerinde renkli çizgi oluşursa.
NOT: Bu bölgelerde oluşan renkli çizginin renk şiddeti ne olursa olsun sonuç pozitif olarak
değerlendirilmelidir.
Negatif: Sadece “C” bölgesinde renkli çizgi oluşur diğer “A” ve “R” bölgesinde çizgi
oluşmazsa.
Geçersiz: Her ne sebeple olursa olsun “C” bölgesinde çizgi oluşmazsa sonuç
geçersizdir. İster “A” ve “R” bölgelerin herhangi birsinde veya her ikisinde de birlikte
renkli çizgi oluşsun sonuç geçersizdir.
KALİTE KONTROL
Test strip veya kasetler kendi içinde kontrole sahiptir. “C” bölgesinde oluşan renkli çizgi internal pozitif
kontroldur. Bu çizginin oluşumu yeterli numune, membranın çalıştığı ve uygun test uygulaması yapıldığı
gösterir. Kontrol solusyonu bu kitlerle sağlanmıyor. Ancak test performansı ve uygun laboratuar
uygulamalarını tespit etmek üzere pozitif ve negatif kontrol uygulanması öneriliyor.
SINIRLAMALAR
1-Tek Aşamalı Rotavirus ve Adenovirus Birlikte Kaset Test (Gaita) sadece vucüt dışı tanı amaçlı
kullanılmalıdır. Bu test sadece insan gaitasında Adeno ve Rota virüs varlığı tespit etmek için kullanılmalıdır.
Kantitatif olan bu testle Rota ve Adeno virüs miktar tayini yapılamaz.
2- Tek Aşamalı Rotavirus ve Adenovirus Birlikte Kaset Test (Gaita) sadece insan gaita numunesinde Adeno
ve Rota virüs tespiti içindir. Adeno ve Rota virüs onaylama (konfirme) testi değildir. İshal etkeni olarak
etiolojik çalışmalarda kullanılamaz.
3-Tüm testlerde olduğu gibi sonucun diğer klinik bulgu ve yöntemlerle uyumlu ve onaylanması
gerekmektedir.
4-Eğer test sonucu negatif fakat klinik bulgular var ise test yeni numune alınarak tekrarlanmalı, durum
değişmez ise farklı bir yöntemle onaylanması gerekmektedir. Bu durum genellikle düşük miktarda virüs
varlığında görünebilir.
Lateks Aglutinasyon
Toplam Sonuç
Poziitif
Negatif
65
1
67
0
167
167
Toplam Sonuç
65
168
233
Bağıl hassasiyeti : %99.9 üzerinde (%94.5-%100)
Bağıl özgünlüğü : %99.4 üzerinde (%96.7-%100)
Bağıl doğruluğu : %99.6 üzerinde (%97.6-%100)
Güvenlik aralığı: %95 olarak tespit edilmiştir.
Tekrarlanabilirlik
Ölçüm İçi
Ölçüm içi tekrarlanabilirlik 7 numunenin 10’ar defa test edildi. Bunlardan biri negatif, biri düşük Rota virüs
pozitif, biri düşük Adeno virüs pozitif, biri orta Rota virüs pozitif, biri orta Adeno virüs pozitif, biri yüksek
Rota virüs pozitif ve sonucusu yüksek Adeno virüs pozitif numunelerdi. Sonuç doğruluğu %99’un üzerinde
tespit edildi.
Ölçümler Arası
Ölçümler arası tekrarlanabilirlik yukarıdaki aynı 7 numunenin 10’ar defa test edildi. Bunlardan biri negatif,
biri düşük Rota virüs pozitif, biri düşük Adeno virüs pozitif, biri orta Rota virüs pozitif, biri orta Adeno virüs
pozitif, biri yüksek Rota virüs pozitif ve sonucusu yüksek Adeno virüs pozitif numunelerdi. Sonuç doğruluğu
%99’un üzerinde tespit edildi.
Çapraz Reaksiyon
Aşağıdaki mikroorganizmaların 1.0 x 109 organizma/ml yoğunlukta çapraz reaksiyon testi yapıldı. Tek
Aşamalı Rotavirus ve Adenovirus Birlikte Kaset Test (Gaita) çapraz reaksiyon teaspit edilmedi.
Staphylococcus aureus-Proteus mirabilis-Neisseria gonorrhea- Pseudomonas aeruginosa- Acinetobacter
spp- Group B Streptococcus-Enterococcus faecalis- Salmonella choleraesius- Proteus vulgaris-Group C
Streptococcus-Gardnerella vaginalis- Enterococcus faecium-Klebsiella pneumoniae-Acinetobacter
calcoaceticus- Hemophilus influenzae-Branhamella catarrhalis- E.coli- Neisseria meningitidisCandida albicans- Chlamydia trachomatis
REFERANSLAR
1. Wadell, G. Laboratory Diagnosis of Infectious Diseases: Principles and Practices. New York: SpringerVerlag, Volume II, 1988: 284-300.
2. WILHELMI I, ROMAN E, SANCHEZ-FAUQUIER A. Viruses causing gastroenteritis. Clin Microbiol Infect.
April. 2003, vol.9:247-262
3. Cubitt, WD (1982) Rotavirus Infection: An Unexpected Hazard in Units Caring for the Elderly. Geriatric
Medicine Today 1: 33-38
4. Hung, T et al (1984) Waterborne outbreak of Rotavirus Diarrhoea in Adults in China caused by a Novel
Rotavirus. Lancet, May 26;1(8387): 1139-1142
5. Cukor, G; Perron, DM; Hudson, R and Blacklow, NR (1984) Detection of Rotavirus in Human Stools by
Using Monoclonal Antibody. J. Clin. Microl. 19: 888-892
6. Wood, D. J. and A. S. Bailey. “Detection of Adenovirus Types 40 and 41 in Stool Specimens by Immune
Electron Microscopy.” Journal of Medical Virology, 1987; 21: 191-199.
7. Nishio, Osamu, M. Ooseto, K. Takagi, Y. Yamasita, Y. Ishihara, and S. Isomura. “Enzyme-Linked Immunosorbent Assay Employing Monoclonal Antibodies for Direct Identification of Enteric Adenoviruses (Ad40,
41) in Feces.” Microbiol. Immunol. 1990; 34(10): 871-877.
8. Wood, D. J., K. Bijlsma, J. C. de Jong, and C. Tonkin. “Evaluation of a Commercial Monoclonal AntibodyBased Enzyme Immunoassay for Detection of Adenovirus Types 40 and 41 in Stool Specimens.” Journal of
Clinical Microbiology, June 1989; 27(6): 1155-1158.
9. Thomas, Eva. E., D. Roscoe, L. Book, B. Bone, L. Browne, and V. Mah. “The Utility of Latex Agglutination
Assays in the Diagnosis of Pediatric Viral Gastroenteritis.” Am. J. Clin. Pathol. 1994; 101:742-746.
Numara: 1150395501
Yayınlama Tarihi: 2007-06
Sonuç
Pozitif
Negatif
One Step Rotavirus and Adenovirus Combo Test Device (Feces)
Package Insert
A rapid, one step test for the qualitative detection of rotavirus and adenovirus in human feces.
For professional in vitro diagnostic use only.
INTENDED USE
The One Step Rotavirus and Adenovirus Combo Test Device (Feces) is a rapid chromatographic
immunoassay for the qualitative detection of rotavirus and adenovirus in human feces specimens
to aid in the diagnosis of rotavirus or adenovirus infection.
SUMMARY
Acute diarrhea disease in young children is a major cause of morbidity worldwide and is a leading
cause of mortality in developing countries.1 Rotavirus is the most common agent responsible for
acute gastroenteritis, mainly in young children.2 Its discovery in 1973 and its association with
infantile gastroenteritis represented a very important advancement in the study of gastroenteritis
not caused by acute bacterial infection. Rotavirus is transmitted by oral-fecal route with an
incubation period of 1-3 days. Although specimen collections taken within the second and fifth day
of the illness are ideal for antigen detection, the rotavirus may still be found while diarrhea
continues. Rotaviral gastroenteritis may result in mortality for populations at risk such as infants,
the elderly and immunocompromised patients.3 In temperate climates, rotavirus infections occur
mainly in the winter months. Endemics as well as epidemics affecting some thousand people have
been reported.4 With hospitalized children suffering from acute enteric disease up to 50% of the
analyzed specimen were positive for rotavirus.5 The viruses replicate in the cell nucleus and tend
to be host species specific producing a characteristic cytopathic effect (CPE). Because rotavirus is
extremely difficult to culture, it is unusual to use isolation of the virus in diagnosing an infection.
Instead, a variety of techniques have been developed to detect rotavirus in feces.
Research has shown that enteric adenoviruses, primarily Ad40 and Ad41, are a leading cause of
diarrhea in many of these children, second only to the rotaviruses.6,7,8,9 These viral pathogens
have been isolated throughout the world, and can cause diarrhea in children year round. Infections
are most frequently seen in children less than two years of age, but have been found in patients of
all ages. Further studies indicate that adenoviruses are associated with 4 - 15% of all hospitalized
cases of viral gastroenteritis.5,6,7,8,9 Rapid and accurate diagnosis of gastroenteritis due to
adenovirus is helpful in establishing the etiology of gastroenteritis and related patient
management. Other diagnostic techniques such as electron microscopy (EM) and nucleic 36acid
hybridization are expensive and labor-intensive. With the self-limiting nature of adenovirus
infection, such expensive and labor-intensive tests may not be necessary.
The One Step Rotavirus and Adenovirus Combo Test Device (Feces) is a rapid chromatographic
immunoassay for the qualitative detection of rotavirus and adenovirus in human feces specimen,
providing results in 10 minutes. The test utilizes antibody specific for rotavirus and adenovirus to
selectively detect rotavirus and adenovirus from human feces specimens.
PRINCIPLE
The One Step Rotavirus and Adenovirus Combo Test Device (Feces) is a qualitative, lateral flow
immunoassay for the detection of rotavirus and adenovirus in human feces specimen. In this test,
the membrane is pre-coated with anti-rotavirus antibody on the R test line region of the test and
anti-adenovirus antibody on the A test line region of the test. During testing, the specimen reacts
with the particle coated with anti-rotavirus antibody and anti-adenovirus antibody. The mixture
migrates upward on the membrane chromatographically by capillary action to react with antirotavirus antibody and anti-adenovirus antibody on the membrane and generate a blue line or a
red line. The presence of these colored lines in test line region indicates a positive result, while
their absence indicates a negative result. To serve as a procedural control, a colored line will
always appear in the control line region indicating that proper volume of specimen has been added
and membrane wicking has occurred.
REAGENTS
The test contains anti-rotavirus antibody and anti-adenovirus antibody coated particles and antirotavirus antibody and anti-adenovirus antibody coated on the membrane.
PRECAUTIONS
For professional in vitro diagnostic use only. Do not use after expiration date.
The test device should remain in the sealed pouch until use.
Do not eat, drink or smoke in the area where the specimens or kits are handled.
Do not use test if pouch is damaged.
Handle all specimens as if they contain infectious agents. Observe established precautions
against microbiological hazards throughout testing and follow standard procedures for proper
disposal of specimens.
Wear protective clothing such as laboratory coats, disposable gloves and eye protection when
specimens are being tested.
The used test should be discarded according to local regulations.
Humidity and temperature can adversely affect results.
STORAGE AND STABILITY
Store as packaged in the sealed pouches either at room temperature or refrigerated (2-30°C).
The test is stable through the expiration date printed on the sealed pouch. The test must remain in
the sealed pouch containing desiccant until use. DO NOT FREEZE. Do not use beyond the expiration
date.
SPECIMEN COLLECTION AND PREPARATION
Viral detection is improved by collecting the specimens at the onset of the symptoms. It has
been reported that the maximum excretion of rotavirus and adenovirus in the feces of patients with
gastroenteritis occurs 3-5 days after onset of symptoms. If the specimens are collected long after
the onset of diarrheic symptoms, the quantity of antigen may not be sufficient to obtain a positive
reaction or the antigens detected may not be linked to the diarrheic episode.
The feces specimen must be collected in clean, dry, waterproof container containing no
detergents, preservatives or transport media.
Bring the necessary reagents to room temperature before use.
MATERIALS
Materials Provided
Test devices Droppers Specimen collection tubes with extraction buffer Package insert
Materials Required But Not Provided
Specimen collection containers Timer Centrifuge and pipette to dispense 80 µL if required
DIRECTIONS FOR USE
Allow the test device, specimen, and buffer to reach room temperature (15-30°C) prior to testing.
1. To collect fecal specimens:
Collect sufficient quantity of feces (1-2 ml or 1-2 g) in a clean, dry specimen collection container to
obtain enough virus particles. Best results will be obtained if the assay is performed within 6 hours
after collection. Specimen collected may be stored for 3 days at 2-8°C if not tested within 6 hours.
For long-term storage, specimens should be kept below -20°C.
2. To process fecal specimens:
For Solid Specimens:
Unscrew the cap of the specimen collection tube， then randomly stab the specimen collection
applicator into the fecal specimen in at least 3 different sites to collect approximately 50 mg of feces
(equivalent to 1/4 of a pea). Do not scoop the fecal specimen.
For Liquid Specimens:
Hold the dropper vertically, aspirate fecal specimens, and then transfer 2 drops (approximately 50
µL) into the specimen collection tube containing the extraction buffer. Tighten the cap onto the
specimen collection tube, and then shake the specimen collection tube vigorously to mix the specimen
and the extraction buffer.
3. Bring the pouch to room temperature before opening it. Remove the test device from the foil
pouch and use it as soon as possible. Best results will be obtained if the test is performed
immediately after opening the foil pouch.
4. Hold the specimen collection tube upright and break off the tip of the specimen collection tube.
Invert the specimen collection tube and transfer 2 full drops of the extracted specimen (approximately
80 L) to the specimen well (S) of the test device, and start the timer. Avoid trapping air bubbles in
the specimen well (S). See illustration below.
5. Read the results at 10 minutes after dispensing the specimen. Do not read results after 20
minutes.
Note: If the specimen does not migrate (presence of particles), centrifuge the diluted specimen
contained in the extraction buffer vial. Collect 80 µL of supernatant, dispense into the specimen
well (S). Start the timer and continue from step 5 onwards in the above instructions for use.
QUALITY CONTROL
An internal procedural control is included in the test. A colored line appearing in the control line
region (C) is an internal positive procedural control. It confirms sufficient specimen volume,
adequate membrane wicking and correct procedural technique. Control standards are not supplied
with this kit; however, it is recommended that positive and negative controls be tested as a good
laboratory practice to confirm the test procedure and to verify proper test performance.
LIMITATIONS
1. The One Step Rotavirus and Adenovirus Combo Test Device (Feces) is for in vitro diagnostic
use only. The test should be used for the detection of human rotavirus and adenovirus in feces
specimens only. Neither the quantitative value nor the rate of increase in human rotavirus and
adenovirus concentration can be determined by this qualitative test.
2. The One Step Rotavirus and Adenovirus Combo Test Device (Feces) will only indicate the
presence of rotavirus and adenovirus in the specimen and should not be used as the sole criteria
for the conforming rotavirus and adenovirus to be etiological agent for diarrhea.
3. As with all diagnostic tests, all results must be interpreted together with other clinical
information available to the physician.
4. If the test result is negative and clinical symptoms persist, additional testing using other clinical
methods is recommended. A negative result does not at any time preclude the possibility of
rotavirus or adenovirus infection with low concentration of virus particles.
EXPECTED VALUES
The One Step Rotavirus and Adenovirus Combo Test Device (Feces) has been compared with
latex agglutination method, demonstrating an overall accuracy of >99.0%.
PERFORMANCE CHARACTERISTICS
Clinical Sensitivity, Specificity and Accuracy
The performance of the One Step Rotavirus and Adenovirus Combo Test Device (Feces) has
been evaluated with 545 clinical specimens collected from children and young adults in omparison
with latex agglutination method. The results show that the One Step Rotavirus and Adenovirus
Combo Test Device (Feces) has high sensitivity and specificity for rotavirus and adenovirus.
Relative Sensitivity: >99.9% (97.9% - 100.0%)* Relative Specificity: 97.8% (93.6% - 99.5%)*
Relative Accuracy: 99.0% (97.2% - 99.8%)* *95% Confidence Intervals
Relative Sensitivity: >99.9% (94.5% - 100.0%)* Relative Specificity: 99.4% (96.7% - 100.0%)*
Relative Accuracy: 99.6% (97.6% - 100.0%)* *95% Confidence Intervals
Precision / Intra-Assay
Within-run precision has been determined by using 10 replicates of seven specimens: a
negative, a rotavirus low positive, an adenovirus low positive, a rotavirus medium positive, an
adenovirus medium positive, a rotavirus high positive and an adenovirus high positive. The
specimens were correctly identified >99% of the time.
Inter-Assay
Between-run precision has been determined by 10 independent assays on the same seven
specimens: a negative, a rotavirus low positive, an adenovirus low positive, a rotavirus medium
positive, an adenovirus medium positive, a rotavirus high positive and an adenovirus high positive.
The specimens were correctly identified >99% of the time.
Cross-Reactivity
Cross reactivity with following organisms has been studied at 1.0 x 109 organisms/ml. The
following organisms were found negative when tested with the One Step Rotavirus and denovirus
Combo Test Device (Feces).
Staphylococcus aureus-Proteus mirabilis-Neisseria gonorrhea- Pseudomonas aeruginosa- Acinetobacter
spp- Group B Streptococcus-Enterococcus faecalis- Salmonella choleraesius- Proteus vulgaris-Group C
Streptococcus-Gardnerella vaginalis- Enterococcus faecium-Klebsiella pneumoniae-Acinetobacter
calcoaceticus- Hemophilus influenzae-Branhamella catarrhalis- E.coli- Neisseria meningitidisCandida albicans- Chlamydia trachomatis
BIBLIOGRAPHY
1. Wadell, G. Laboratory Diagnosis of Infectious Diseases: Principles and Practices. New York: SpringerVerlag, Volume II, 1988: 284-300.
2. WILHELMI I, ROMAN E, SANCHEZ-FAUQUIER A. Viruses causing gastroenteritis. Clin Microbiol Infect.
April. 2003, vol.9:247-262
3. Cubitt, WD (1982) Rotavirus Infection: An Unexpected Hazard in Units Caring for the Elderly. Geriatric
Medicine Today 1: 33-38
4. Hung, T et al (1984) Waterborne outbreak of Rotavirus Diarrhoea in Adults in China caused by a Novel
Rotavirus. Lancet, May 26;1(8387): 1139-1142
5. Cukor, G; Perron, DM; Hudson, R and Blacklow, NR (1984) Detection of Rotavirus in Human Stools by
Using Monoclonal Antibody. J. Clin. Microl. 19: 888-892
6. Wood, D. J. and A. S. Bailey. “Detection of Adenovirus Types 40 and 41 in Stool Specimens by Immune
Electron Microscopy.” Journal of Medical Virology, 1987; 21: 191-199.
7. Nishio, Osamu, M. Ooseto, K. Takagi, Y. Yamasita, Y. Ishihara, and S. Isomura. “Enzyme-Linked Immunosorbent Assay Employing Monoclonal Antibodies for Direct Identification of Enteric Adenoviruses (Ad40,
41) in Feces.” Microbiol. Immunol. 1990; 34(10): 871-877.
8. Wood, D. J., K. Bijlsma, J. C. de Jong, and C. Tonkin. “Evaluation of a Commercial Monoclonal AntibodyBased Enzyme Immunoassay for Detection of Adenovirus Types 40 and 41 in Stool Specimens.” Journal of
Clinical Microbiology, June 1989; 27(6): 1155-1158.
9. Thomas, Eva. E., D. Roscoe, L. Book, B. Bone, L. Browne, and V. Mah. “The Utility of Latex Agglutination
Assays in the Diagnosis of Pediatric Viral Gastroenteritis.” Am. J. Clin. Pathol. 1994; 101:742-746.
Number: 1150395501 /Effective Date: 2007-06